КОМИССИОННЫЕ ИСПЫТАНИЯ КОНЪЮНКТИВАЛЬНОЙ ЖИВОЙ СУХОЙ ВАКЦИНЫ ПРОТИВ БРУЦЕЛЛЕЗА ОВЕЦ И КОЗ ИЗ ШТАММА BRUCELLA MELITENSIS REV-1
DOI:
https://doi.org/10.52578/2305-9397-2024-4-1-306-318Аннотация
В статье приведены результаты комиссионного испытания физико-химических и биологических свойств экспериментальной серии вакцины против бруцеллеза овец и коз из штамма Brucella melitensis Rev-1. При выполнении исследовательских работ использованы бактериологические методы. Наиболее эффективным способом борьбы с бруцеллезом на сегодняшний день считается вакцинация животных. Результаты комиссионных исследовании показали, что вакцина соответствует по своим физико-химическим свойствам всем предъявляемым требованиям и пригодна для специфической профилактики против бруцеллеза овец и коз. Комиссионные испытания физико-химических, биологических свойств конъюнктивальной вакцины изготовленная из штамма Brucella melitensis Rev-1 живой сухой против бруцеллеза овец и коз закончены с положительными результатами и протоколы, акты исследований подписаны членами комиссии ТОО «Научно-исследовательский институт проблем биологической безопасности».
На данную вакцину живую сухую конъюнктивальную изготовленного из штамма Brucella melitensis Rev-1, планируется проводить апробационные испытания в условиях Национального референтного центра по ветеринарии Комитета ветеринарного контроля и надзора Министерства сельского хозяйства Республики Казахстан в дальнейшем регистрировать в реестр и получить регистрационных удостоверений на ветеринарные препараты, и применить в овцеводческих хозяйствах.
Библиографические ссылки
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ
Page, M.J. The PRISMA 2020 statement: An updated guideline for reporting systematic reviews [Text] / M.J. Page // BMJ 2021, 372, 71. [CrossRef] [PubMed]
Verdiguel-Fernández, L. Brucella melitensis omp31 mutant is attenuated and confers protection against virulent Brucella melitensis challenge in BALB [Text] / L. Verdiguel-Fernández // Microbiol. Biotechnol. 2020, 30, 497-504. [CrossRef]
Li, Z . Development and evaluation of in murine model, of an improved live-vaccine candidate against brucellosis from to Brucella melitensis vjbR deletion mutant. [Text] / Z. Li et al. // Microb. Pathog. 2018, 124, 250–257. [CrossRef]
ФАО/ВОЗ //Региональное совещание по борьбе с бруцеллёзом в Центральной Азии и Восточной Европе [Teкст] // ФАО/ВОЗ, 09-11 апреля 2013 г., - Измир, Турция.
Menachem Banai Control of small ruminant brucellosis by use of Brucella melitensis Rev.1 vaccine: Laboratory aspects and field observations. January 2003. [Text] / Menachem Banai Veterinary Microbiology 90(1-4):497-519. DOI: 10.1016/S0378-1135(02)00231-6. Source PubMed.
Zhang, J. The Brucella melitensis M5-90∆manB live vaccine candidate is safer than M5-90 and confers protection against wild-type challenge in BALB/c mice [Text] / J. Zhang // Microb. Pathog. 2017, 112, 148–155. [CrossRef]
Verdiguel-Fernández, L. Brucella melitensis virulent challenge in BALB [Text] / Verdiguel- L. Fernández //Microbiol. Biotechnol. 2020, 30, 497–504. [CrossRef]
Jacob, J.M. Characterization of Brucella abortus S19 as a challenge strain for use in a mouse model of brucellosis [Text] / J.M. Jacob // Microbes Infect. 2021, 23, 104809. [CrossRef]
Sadeghi, Z. Mannosylated chitosan nanoparticles loaded with FliC antigen as a novel vaccine candidate against Brucella melitensis and Brucella abortus infection [Text] / Z. Sadeghi // Biotechnol. 2020, 310, 89–96. [CrossRef]
Abkar, M. Oral immunization of mice with Omp31-loaded N-trimethyl chitosan nanoparticles induces high protection against Brucella melitensis infection [Text]/ M. Abkar //Fasihi-Ramandi, M.; Kooshki, H.; Lotfi, A.S. Int. J. Nanomed. 2017, 12, 8769. [CrossRef]
Maleki, M. Preparation of a nanovaccine against Brucella melitensis M16 based on PLGA nanoparticles and oligopolysaccharide antigen [Text] / M. Maleki // Cells Nanomed. Biotechnol. 2019, 47, 4248–4256. [CrossRef]
Golshani, M. Evaluation of Poly (I: C) and combination of CpG ODN plus Montanide ISA adjuvants to enhance the efficacy of outer membrane vesicles as an acellular vaccine against Brucella melitensis infection in mice [Text] / M. Golshani // Int. Immunopharmacol. 2020, 84, 106573. [CrossRef] [PubMed]
Zhu L. Comparison of immune effects between Brucella recombinant Omp10-Omp28-L7/L1 proteins expressed in eukaryotic and prokaryotic systems [Text]/ Zhu // Vet. Sci. 2020, 7, 576. [CrossRef] [PubMed]
Laine, C.G. Global Estimate of Human Brucellosis Incidence [Text] / C.G. Laine //Emerg. Infect. Dis. 2023, 29, 1789–1797. [CrossRef]
Franco, M. Human brucellosis [Text] / M. Franco // Infect. Dis. 2007, 7, 775–786. [CrossRef]
Hou H. The advances in brucellosis vaccines [Text]: // Hou, H.; Liu, X.; Peng, Q. Vaccine 2019, 37, 3981–3988. [CrossRef]
Gomez, L. Multivalent Fusion DNA Vaccine against Brucella abortus [Text] / L. Gomez // Int. 2017, 2017, 6535479. [CrossRef]
Moreno, E. The role of neutrophils in brucellosis [Text]/ E. Moreno // Mol. Biol. Rev. 2020, 84, e00048-e20. [CrossRef] [PubMed]
ГОСТ 32808- 2014 Средства лекарственные для ветеринарного применения. Вакцины против бруцеллеза животных. Технические условия.
ГОСТ 24061 - 2012 Средства лекарственные биологические лиофилизированные для ветеринарного применения. Метод определения массовой доли влаги.
WOAH Terrestrial Manual 2022. BRUCELLOSIS (INFECTION WITH B. ABORTUS,
B . MELITENSIS AND B . SUIS. CHAPTER 3 .1. 4 . Р. 36-37.
REFERENCES
Page, M.J. The PRISMA 2020 statement: An updated guideline for reporting systematic reviews [Text] / M.J. Page // BMJ 2021, 372, 71. [CrossRef] [PubMed]
Verdiguel-Fernández, L. Brucella melitensis omp31 mutant is attenuated and confers protection against virulent Brucella melitensis challenge in BALB [Text] / L. Verdiguel-Fernández // Microbiol. Biotechnol. 2020, 30, 497-504. [CrossRef]
Li, Z . Development and evaluation of in murine model, of an improved live-vaccine candidate against brucellosis from to Brucella melitensis vjbR deletion mutant. [Text] / Z. Li et al. // Microb. Pathog. 2018, 124, 250–257. [CrossRef]
FAO/VOZ //Regional'noe soveshchanie po bor'be s brucellyozom v Central'noj Azii i Vostochnoj Evrope [Tekst] // FAO/VOZ, 09-11 aprelya 2013 g., - Izmir, Turciya.
Menachem Banai Control of small ruminant brucellosis by use of Brucella melitensis Rev.1 vaccine: Laboratory aspects and field observations. January 2003. [Text] / Menachem Banai Veterinary Microbiology 90(1-4):497-519. DOI: 10.1016/S0378-1135(02)00231-6. Source PubMed.
Zhang, J. The Brucella melitensis M5-90∆manB live vaccine candidate is safer than M5-90 and confers protection against wild-type challenge in BALB/c mice [Text] / J. Zhang // Microb. Pathog. 2017, 112, 148–155. [CrossRef]
Verdiguel-Fernández, L. Brucella melitensis virulent challenge in BALB [Text] / Verdiguel- L. Fernández //Microbiol. Biotechnol. 2020, 30, 497–504. [CrossRef]
Jacob, J.M. Characterization of Brucella abortus S19 as a challenge strain for use in a mouse model of brucellosis [Text] / J.M. Jacob // Microbes Infect. 2021, 23, 104809. [CrossRef]
Sadeghi, Z. Mannosylated chitosan nanoparticles loaded with FliC antigen as a novel vaccine candidate against Brucella melitensis and Brucella abortus infection [Text] / Z. Sadeghi // Biotechnol. 2020, 310, 89–96. [CrossRef]
Abkar, M. Oral immunization of mice with Omp31-loaded N-trimethyl chitosan nanoparticles induces high protection against Brucella melitensis infection [Text]/ M. Abkar //Fasihi-Ramandi, M.; Kooshki, H.; Lotfi, A.S. Int. J. Nanomed. 2017, 12, 8769. [CrossRef]
Maleki, M. Preparation of a nanovaccine against Brucella melitensis M16 based on PLGA nanoparticles and oligopolysaccharide antigen [Text] / M. Maleki // Cells Nanomed. Biotechnol. 2019, 47, 4248–4256. [CrossRef]
Golshani, M. Evaluation of Poly (I: C) and combination of CpG ODN plus Montanide ISA adjuvants to enhance the efficacy of outer membrane vesicles as an acellular vaccine against Brucella melitensis infection in mice [Text] / M. Golshani // Int. Immunopharmacol. 2020, 84, 106573. [CrossRef] [PubMed]
Zhu L. Comparison of immune effects between Brucella recombinant Omp10-Omp28-L7/L1 proteins expressed in eukaryotic and prokaryotic systems [Text]/ Zhu // Vet. Sci. 2020, 7, 576. [CrossRef] [PubMed]
Laine, C.G. Global Estimate of Human Brucellosis Incidence [Text] / C.G. Laine //Emerg. Infect. Dis. 2023, 29, 1789–1797. [CrossRef]
Franco, M. Human brucellosis [Text] / M. Franco // Infect. Dis. 2007, 7, 775–786. [CrossRef]
Hou H. The advances in brucellosis vaccines [Text]: // Hou, H.; Liu, X.; Peng, Q. Vaccine 2019, 37, 3981–3988. [CrossRef]
Gomez, L. Multivalent Fusion DNA Vaccine against Brucella abortus [Text] / L. Gomez // Int. 2017, 2017, 6535479. [CrossRef]
Moreno, E. The role of neutrophils in brucellosis [Text]/ E. Moreno // Mol. Biol. Rev. 2020, 84, e00048-e20. [CrossRef] [PubMed]
GOST 32808- 2014 Sredstva lekarstvennye dlya veterinarnogo primeneniya. Vakciny protiv brucelleza zhivotnyh. Tekhnicheskie usloviya.
GOST 24061 - 2012 Sredstva lekarstvennye biologicheskie liofilizirovannye dlya veterinarnogo primeneniya. Metod opredeleniya massovoj doli vlagi.
WOAH Terrestrial Manual 2022. BRUCELLOSIS (INFECTION WITH B. ABORTUS,
B . MELITENSIS AND B . SUIS. CHAPTER 3 .1. 4 . R. 36-37.
