ЖАБАЙЫ ЖАНУАРЛАРДЫҢ ТРИХИНЕЛЛЕЗБЕН ЗАҚЫМДАНУ ДӘРЕЖЕСІ ЖӘНЕ ОЛАРДЫҢ ТҮРЛЕРІН АНЫҚТАУ
DOI:
https://doi.org/10.52578/2305-9397-2024-4-1-225-234Ключевые слова:
Жабайы жануарлар, бұлшықет сынамалары, Trichinella nativa, компрессорлық әдіс, инвазия.Аннотация
В Казахстане ежегодно регистрируется 0,58 случаев трихинеллеза на 100 тыс. населения, хотя этот показатель не является достоверным. Люди заражаются трихинеллезом, если потребляют сырое или недоваренное мясо, зараженное личинками трихинеллеза. Для каждого региона страны имеется соответствующий природно-очаговый характер трихинеллеза. Данные о динамике распространения трихинеллеза среди восприимчивых животных практически отсутствуют, что затрудняет организацию профилактических и контрольных мероприятий.
В настоящей статье представлены результаты компрессорной трихинеллоскопии и молекулярно-генетического исследования 111 образцов мышечной ткани трупов диких животных (8 кабанов, 70 волков, 9 корсаков, 21 лисицы и трех барсука), добытых по лицензионному отстрелу в различных регионах Казахстана. Образцы ДНК, выделенные из личинок трихинелл, были исследованы в мультиплексной ПЦР с использованием 5-видовых праймеров внутренних транскрибируемых участков ITS1, ITS2 и ESV для генотипирования видов, и было показано, что я во всех регионах имеет распространение вид Trichinella nativa. Самая высокая экстенсивность инвазии (ЭИ) Т.nativa составляла 30% у волков, 19% и 23,4% у лисиц и барсуков, соответственно, в то время как у кабанов и барсуков трихинеллы не были обнаружены. Средняя интенсивность инвазии (ИИ) заражения Т.nativa составила 4,7 личинок на 1 г мышечной ткани.
Библиографические ссылки
Sadaow, L. Oranuch, S. Pewpan, M. Maleewong, W. Development of an immunochromatographic point-of-care test for detection of IgG antibody in serodiagnosis of human trichinellosis [Text] / L. Sadaow [ end etc.] // Tongjit Thanchomnang. – 2018. – Vol. 20. – P. 1478-1497.
Aranzamendi, C. Tefsen, B. Jansen, M. Chiumiento, L. Van Die I Glycan microarray profilin of parasite infection sera identifies the LDNF glycan as a potential antigen for serodiagnosis of Trichinellosis [Text] / C. Aranzamendi [ end etc.] // Exp. Parasitol. – 2011. – Vol. 129. – P. 221-226.
Alvin, A. Edoardo, G. Gamble, H Ray. Nöckler, K. Trichinella diagnostics and control: mandatory and best practices for ensuring food safety [Text] / A. Alvin [ end etc.] // Vet Parasitol. – 2009. – Vol.159. – P.197-205.
Nöckler, K. Reckinger, S. Broglia, A. Evaluation of a Western Blot and ELISA for the detection of anti-Trichinella-IgG in pig sera [Text] / K. Nöckler [ end etc.] // Vet Parasitol. – 2009. – Vol. 163. – P. 7-341.
Cui, J. Dan L, Ruo. L, Wang. Zh, Quan W. Proteomic analysis of surface proteins of Trichinella spiralis muscle larvae by two-dimensional gel electrophoresis and mass spectrometry [Text]/ J. Cui [ end etc.] // Parasit Vectors. -2013. – Vol. 16. – P. 6-355.
Gamble, H R. Graham, C E. Monoclonal antibody-purified antigen for the immunodiagnosis of trichinosis [Text]/ H. R. Gamble, C E. Graham // Am J Vet Res. – 2014. – Vol. 45. – P. 67-74.
Gómez-Morales, Maria Angeles. Ludovisi, A. Distinctive Western blot pattern to recognize Trichinella infections in humans and pigs [Text] / Maria Angeles Gómez-Morales [ end etc.] // Int J Parasitol. – 2012. – Vol. 42. – P. 23- 1017.
Gómez-Morales, Maria Angeles. Ludovisi, A. Amati, M. Cherchi, S. Validation of an enzyme-linked immunosorbent assay for diagnosis of human trichinellosis [Text]/ Maria Angeles Gómez-Morales [ end etc.] // Clin Vaccine Immunol. – 2008. – Vol.15. – P.9-1723.
Gottstein, B. Pozio, E. Nöckler, K. Epidemiology, diagnosis, treatment, and control of trichinellosis [Text] / B. Gottstein [ end etc.] // Clin Microbiol Rev. – 2009. – Vol. 22. – P.45-127.
Hill, D. E. Forbes, L. Gajadhar, A. A. Gamble, H. R. Viability and infectivity of Trichinella spiralis muscle larvae in frozen horse tissue [Text] / D. E. Hill [ end etc.] // Vet Parasito. – 2007. – Vol.146. – P.6-102.
Liu, M. Y. Wang, X. L. Identification of stage-specifically expressed genes of Trichinella spiralis by suppression subtractive hybridization [Text] / M. Y. Liu [ end etc.] // Parasitology. – 2007. – Vol.134. – P.55-1443.
Nagano, I. Wu, Zh. Takahashi, Y. Species-specific antibody responses to the recombinant 53-kilodalton excretory and secretory proteins in mice infected with Trichinella spp [Text] I. Nagano
[ end etc.] // Clin Vaccine Immunol. – 2008. – Vol.15. – P.73-468.
Edoardo, P. World distribution of Trichinella spp. infections in animals and humans [Text] / P. Edoardo // Vet Parasitol. – 2007. – Vol. 149. – P.3-21.
Mayer-Scholl, A. Reckinger, S. Schulze, Ch. Nöckler, K. Study on the occurrence of Trichinella spp. in raccoon dogs in Brandenburg, Germany [Text] / A. Mayer-Scholl [ end etc.] // 14 th International Conference on Trichinellosis. – 2016. – Vol. 231. – 102-105.
Li Wang, Zhong. Quan, Wang, Hu, Dan Dan. Cui, Jing. Proteomic analysis of Trichinella spiralis muscle larval excretory-secretory proteins recognized by early infection sera [Text] / Wang Zhong Li [ end etc.] // Biomed Res Int. – 2013. – Vol. 213. – P.139-745.
Zhong-Quan, Wang. Guang-Yu, Fu. Detection of Trichinella spiralis circulating antigens in serum of experimentally infected mice by an IgY-mAb sandwich ELISA serum [Text] / Wang Zhong-Quan [ end etc.] // Foodborne Pathog. – 2012. – P. 33-727.
Li, ТWang, Cui, Jing. Hu, Dan Dan. Liu, Ruo Dan. Quan, Zhong. Wang Identification of early diagnostic antigens from major excretory-secretory proteins of Trichinella spiralis muscle larvae using immunoproteomics [Text] / ТWang Li [ end etc.]. – 2014. – P. 7-40. DOI: 10.1186/1756-3305-7-40.
Zocevic, A. Mace, P. Vallee, I. Blaga, R. Identification of Trichinella spiralis early antigens at the pre-adult and adult stages [Text] / A. Zocevic [ end etc.] // Parasitology. – 2011. – Vol.138. – P.71-463.
Sheruova, E. A. Identification of wild animals infected with Trichinellosis in Kazakhstan [Text] / E. A. Sheruova // Материалы международной научно-теоретической конференции «Сейфуллинские чтения – 17: «Современная аграрная наука: цифровая трансформация». – Т.1 №1. – С. 351-353.
Шеруова, Е. А. Казиева, М. Диханбай, Ә. Әкібеков, Ө.С. Эксперименттік жағдайда Trichinella nativа балаңқұрттарымен жұқтырылған жануарларда антиденелердің түзілу динамикасы [Мәтін] / Е. А. Шеруова [және т.б.] // Материалы международной научно-теоретической конференции «Сейфуллинские чтения – 17: «Современная аграрная наука: цифровая трансформация». – Т.1 №1. – С. 365-367.
Жагипар, Ф. С. Сыздыкова, А.С. Акибеков, О. С. Определение вида Trichinella с помощью мультиплексной ПЦР [Текст] / Ф. С. Жагипар [и др.] // III Международная научно-практическая конференция. Лиссабон. Португалия. - 2021.
