ВАЛИДАЦИЯ СТАНДАРТНЫХ СЫВОРОТОК ДЛЯ ДИАГНОСТИКИ ИНФЕКЦИОННОГО РИНОТРАХЕИТА КРС НА МЕЖДУНАРОДНОМ УРОВНЕ
DOI:
https://doi.org/10.52578/2305-9397-2025-1-1-186-196Ключевые слова:
инфекционный ринотрахеит, крупный рогатый скот, серологическая диагностика, стандартные сыворотки, эпизоотический мониторинг, ИФА, вирусные инфекцииАннотация
Инфекционный ринотрахеит крупного рогатого скота (ИРТ КРС), вызываемый вирусом герпеса типа 1 (BoHV-1), остается важной проблемой для животноводства. Это заболевание, характеризующееся широким спектром клинических проявлений, включая респираторные заболевания, конъюнктивит, аборты, генитальные инфекции и энцефалит, наносит существенный экономический ущерб, связанный с потерями продуктивности, снижением воспроизводительных функций и затратами на лечение и профилактику. В связи с этим, разработка и валидация эффективных методов диагностики данного заболевания является актуальной задачей. В настоящей работе представлены результаты исследования, посвященного созданию и валидации панели стандартных сывороток для диагностики ИРТ КРС. Материалом исследования служили образцы сыворотки крови, отобранные у крупного рогатого скота в различных регионах Казахстана. Проведена оценка аналитических характеристик сывороток, включая определение титра антител, специфичности и стабильности. Сравнительные испытания с международными референсными образцами и корреляционный анализ подтвердили соответствие разработанных казахстанских сывороток международным стандартам. Выявлена высокая серопозитивность к BoHV-1 среди исследуемого поголовья. Определен перспективный кандидат для использования в качестве стандартной сыворотки. Полученные результаты вносят вклад в совершенствование системы диагностики ИРТ КРС и создают предпосылки для эффективного эпизоотического контроля данного заболевания.
Библиографические ссылки
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ
Flores Eduardo F. Infectious bovine rhinotracheitis virus (bovine herpesvirus 1) pathogenesis and immunity [Text] / Reichel Michael P // Vet Clin North Am Food Anim Pract. – 2019. –V. 35(1):
-92. doi:10.1016/j.cvfa.2018.09.005.
Donofrio G. Bovine herpesvirus 1: The "red nose" challenge [Text] / Cavirani S, Taddei S, [et al.] // Vet Microbiol. - 2018;221:88-96. doi:10.1016/j.vetmic.2018.06.014
Muylkens B. Bovine herpesvirus 1 infection and infectious bovine rhinotracheitis [Text] / Thiry E, Kirten P, Schynts F, Vannuffel P // Vet Res. – 2007. - 38(2):181-209. doi:10.1051/vetres:2006056
Gallagher M. Economic impact of infectious bovine rhinotracheitis virus [Text] / Dobson H. // Vet Rec. – 2014. -175(11):272-276. doi:10.1136/vr.102339
Jones C. Bovine Herpesvirus 1 (BHV-1) [Text] / Chowdhury S // In: Fenner's Veterinary Virology. 5th ed. Academic Press. -2017. -р. 291-309.
Rock D.L. Mechanisms of Herpesvirus Latency: An Update [Text] // Viruses. - 2020;12(6):652. doi:10.3390/v12060652
Kramps J.A. Development and validation of an international standard for bovine herpesvirus
gE antibody detection [Text] / Banks M, Beer M [et al.] // J Vet Diagn Invest. – 2010. - 22(2). –р. 220-225. doi:10.1177/104063871002200208.
OIE Terrestrial Manual 2023. Chapter 3.4.12. Infectious bovine rhinotracheitis/infectious pustular vulvovaginitis. World Organisation for Animal Health. [Text] / [Accessed January 30, 2025].
Patel J. R. Harmonization of serological diagnosis of infectious bovine rhinotracheitis: The European Union bovine herpesvirus 1 ELISA proficiency testing scheme [Text] / Björklund HV, Edwards S. [et al.] // J Vet Diagn Invest. – 2009. - 21(5):639-645. doi:10.1177/104063870902100507
Ackermann M. Prophylaxis and control of infectious bovine rhinotracheitis [Text] / Engels M. // Vet Clin North Am Food Anim Pract. – 2006. - 22(3):659-673. doi:10.1016/j.cvfa.2006.07.004.
Saliki J. T. Mechanisms of immunosuppression induced by bovine herpesvirus 1 (BHV-1) [Text] / Witter R. L. // Vet Immunol Immunopathol. – 1995. - 45(3-4). –р. 191-206. doi:10.1016/0165-2427(94)05425-z
Frey A. Performance of three commercial ELISAs for the detection of antibodies to bovine herpesvirus 1 in serum and bulk milk [Text] / Bachofen C., Burgi E. [et al.] // Vet Microbiol. -2003. - 94(3). –р. 201-212. doi:10.1016/s0378-1135(03)00070-9
World Organisation for Animal Health (OIE). Manual of Diagnostic Tests and Vaccines for Terrestrial Animals. Chapter 2.1.8. Principles of validation of diagnostic assays for infectious diseases. Paris: OIE. [Text] / - 2021.
Nixon G. Recent advances in the diagnosis and control of bovine herpesvirus-1 infection [Text] / Jones C. [et al.] // Vet J. – 2019. – V. 248. –p. 62-67. doi:10.1016/j.tvjl.2019.03.006.
El-Mayet A.M. Serological prevalence and risk factors associated with bovine herpesvirus type-1 infection in cattle herds in Egypt [Text] / Abd El-Rahman AH., El-Kenawy A.A. [et al.] // Trop Anim Health Prod. – 2021. - 53(4):674. doi:10.1007/s11250-021-02689-5.
Kahrs RF. Infectious bovine rhinotracheitis: A review and update [Text] // J Am Vet Med Assoc. – 1981. -178(10). –p. 1055-1064.
Oirschot J. T. Vaccines against bovine herpesvirus 1 [Text] // Anim Health Res Rev. – 2009. –V. 10(2). –p. 127-139. doi:10.1017/s1466252309990147.
Kaashoek M. J. An inactivated vaccine based on a glycoprotein E-negative strain of bovine herpesvirus 1 induces protective immunity and reduces virus shedding after challenge [Text] / Moerman A, Madic J. [et al.] // Vaccine. – 1995. –V. 13(2). –p. 151-156. doi:10.1016/0264-410x(94)00151-h.
Bashenova E. Selection of strong positive serum samples from cattle infected with bovine viral diarrhea [Text] / Nissanova, R., Zharmukhametova, A. [et al.] // Eurasian Journal of Applied Biotechnology. –V. (3). –p. 66–72. https://doi.org/10.11134/btp.3.2024.7
Azkur A.K. Immunity to bovine herpesvirus 1 [Text] / Babiuk LA, van Drunen Littel-van den Hurk S. // Anim Health Res Rev. – 2007. –V. 8(1). –p. 101-115. doi:10.1017/s1466252307001212
REFERENCES
Flores Eduardo F. Infectious bovine rhinotracheitis virus (bovine herpesvirus 1) pathogenesis and immunity [Text] / Reichel Michael P // Vet Clin North Am Food Anim Pract. – 2019. –V. 35(1):79-92. doi:10.1016/j.cvfa.2018.09.005.
Donofrio G. Bovine herpesvirus 1: The "red nose" challenge [Text] / Cavirani S, Taddei S, [et al.] // Vet Microbiol. - 2018;221:88-96. doi:10.1016/j.vetmic.2018.06.014
Muylkens B. Bovine herpesvirus 1 infection and infectious bovine rhinotracheitis [Text] / Thiry E, Kirten P, Schynts F, Vannuffel P // Vet Res. – 2007. - 38(2):181-209. doi:10.1051/vetres:2006056
Gallagher M. Economic impact of infectious bovine rhinotracheitis virus [Text] / Dobson H. // Vet Rec. – 2014. -175(11):272-276. doi:10.1136/vr.102339
Jones C. Bovine Herpesvirus 1 (BHV-1) [Text] / Chowdhury S // In: Fenner's Veterinary Virology. 5th ed. Academic Press. -2017. -р. 291-309.
Rock D.L. Mechanisms of Herpesvirus Latency: An Update [Text] // Viruses. - 2020;12(6):652. doi:10.3390/v12060652
Kramps J.A. Development and validation of an international standard for bovine herpesvirus
gE antibody detection [Text] / Banks M, Beer M [et al.] // J Vet Diagn Invest. – 2010. - 22(2). –р. 220-225. doi:10.1177/104063871002200208.
OIE Terrestrial Manual 2023. Chapter 3.4.12. Infectious bovine rhinotracheitis/infectious pustular vulvovaginitis. World Organisation for Animal Health. [Text] / [Accessed January 30, 2025].
Patel J. R. Harmonization of serological diagnosis of infectious bovine rhinotracheitis: The European Union bovine herpesvirus 1 ELISA proficiency testing scheme [Text] / Björklund HV, Edwards S. [et al.] // J Vet Diagn Invest. – 2009. - 21(5):639-645. doi:10.1177/104063870902100507
Ackermann M. Prophylaxis and control of infectious bovine rhinotracheitis [Text] / Engels M. // Vet Clin North Am Food Anim Pract. – 2006. - 22(3):659-673. doi:10.1016/j.cvfa.2006.07.004.
Saliki J. T. Mechanisms of immunosuppression induced by bovine herpesvirus 1 (BHV-1) [Text] / Witter R. L. // Vet Immunol Immunopathol. – 1995. - 45(3-4). –р. 191-206. doi:10.1016/0165-2427(94)05425-z
Frey A. Performance of three commercial ELISAs for the detection of antibodies to bovine herpesvirus 1 in serum and bulk milk [Text] / Bachofen C., Burgi E. [et al.] // Vet Microbiol. -2003. - 94(3). –р. 201-212. doi:10.1016/s0378-1135(03)00070-9
World Organisation for Animal Health (OIE). Manual of Diagnostic Tests and Vaccines for Terrestrial Animals. Chapter 2.1.8. Principles of validation of diagnostic assays for infectious diseases. Paris: OIE. [Text] / - 2021.
Nixon G. Recent advances in the diagnosis and control of bovine herpesvirus-1 infection [Text] / Jones C. [et al.] // Vet J. – 2019. – V. 248. –p. 62-67. doi:10.1016/j.tvjl.2019.03.006.
El-Mayet A.M. Serological prevalence and risk factors associated with bovine herpesvirus type-1 infection in cattle herds in Egypt [Text] / Abd El-Rahman AH., El-Kenawy A.A. [et al.] // Trop Anim Health Prod. – 2021. - 53(4):674. doi:10.1007/s11250-021-02689-5.
Kahrs RF. Infectious bovine rhinotracheitis: A review and update [Text] // J Am Vet Med Assoc. – 1981. -178(10). –p. 1055-1064.
Oirschot J. T. Vaccines against bovine herpesvirus 1 [Text] // Anim Health Res Rev. – 2009. –V. 10(2). –p. 127-139. doi:10.1017/s1466252309990147.
Kaashoek M. J. An inactivated vaccine based on a glycoprotein E-negative strain of bovine herpesvirus 1 induces protective immunity and reduces virus shedding after challenge [Text] / Moerman A, Madic J. [et al.] // Vaccine. – 1995. –V. 13(2). –p. 151-156. doi:10.1016/0264-410x(94)00151-h.
Bashenova E. Selection of strong positive serum samples from cattle infected with bovine viral diarrhea [Text] / Nissanova, R., Zharmukhametova, A. [et al.] // Eurasian Journal of Applied Biotechnology. –V. (3). –p. 66–72. https://doi.org/10.11134/btp.3.2024.7
Azkur A.K. Immunity to bovine herpesvirus 1 [Text] / Babiuk LA, van Drunen Littel-van den Hurk S. // Anim Health Res Rev. – 2007. –V. 8(1). –p. 101-115. doi:10.1017/s1466252307001212
