ВОЗБУДИТЕЛИ ПЛЕСНЕВЫХ МИКОЗОВ КОЖИ ЖИВОТНЫХ, ЦИРКУЛИРУЮЩИЕ В СЕВЕРНЫХ И ЦЕНТРАЛЬНЫХ РЕГИОНАХ КАЗАХСТАНА
DOI:
https://doi.org/10.52578/2305-9397-2025-3-1-223-237Ключевые слова:
кератинофильные грибы, оппортунистические микозы, кератинолитическая активность, дерматофиты.Аннотация
Образцы шерсти 760 проб, собранных из Акмолинской, Павлодарской, Карагандинской, Северо-Казахстанской, Костанайской и Улытауской области были исследованы на наличие кератинофильных грибов. В общем выделено 281 изолятов грибов, среди них Aspergillus spp. выделен в 60,9% случаев, Trichophyton spp. 4,7%, Microsporum spp. 1,5%, Alternaria spp. 11%, Mucor spp. 9,4%, Chrysosporium spp. 3,1%, Rhizomucor spp., Aureobasidium spp., Botryotrichum spp., Penicillium spp., Cladosporium spp., Chaetomium spp. в 1,5% случаях. Приведены данные кератинофильной активности: высокой обладали A. pseudoglaucus, A. amstelodami, A. flavus, A. cristatus, B. piluliferum, средней A. nidulans, A. pseudoglaucus, A. fumigatus, A. shevalieri, A. flavus, A. protuberus, A. terreus, A. pullulans, M. circidelloides, C. globosum и низкой A. protuberus, A. cristatus, A. niger, R. pusillus, C. zonatum, P. anthinellum, A. alternata, Cladosporium spp. Кератинолитической активностью обладали C. zonatum, Chaetomium spp., A. alternata, Rhizomucor spp., M. circidelloides, Cladosporium spp., A. pullulans, что визуально проявлялось в виде эрозии кутикулы волос, наличии перфорации, мицелий на поверхности и внутри полости волоса. Из общего числа изолятов 26,7% обладали кератинолитическими свойствами.
Таким образом, полученные данные свидетельствуют о циркуляции патогенных кератинофильных оппортунистических грибов в центральных и северных регионах РК.
Библиографические ссылки
Jangid R., Begum T. Isolation and Identification of Keratinophilic Fungi from Soil Samples of Different Animal Habitat of Ajmer District, India. [Text] Int. J. Pure App. Biosci. – 2018. – № 6(2) – P. 646–652. DOI: http://dx.doi.org/10.18782/2320-7051.6344
Gupta R., Ramnani P. Microbial keratinases and their perspective applications: an overview. [Text] Appl. Microbiol. Biotechnol. – 2006. – № 4 – P. 1–13.
Ali-Shtayeh M.S., Sharaf M.A., Hamarsha Z. Keratinophilic Fungi from Soils and Their Role in Dermatophytosis in Palestine. [Text] Mycoses. – 2002. – № 45(9–10) – P. 406–413. DOI: https://doi.org/10.1046/j.1439-0507.2002.00899.x
McKittrick J., Chen P.Y., Bodde S.G., Yang W., Novitskaya E.E., Meyers M.A. The structure, functions, and mechanical properties of keratin. [Text] JOM. – 2012. – № 64 – P. 449–468. DOI: 10.1007/s11837-012-0302-8
Calin M., et al. Degradation of keratin substrates by keratinolytic fungi. [Text] Electron. J. Biotechnol. – 2017. – № 28 – P. 101–112.
Kukhar Y., Bailina G., Smagulova A., Uakhit R., Kiyan V. Characteristics of Chrysosporium spp. Pathogens Causing Skin Mycoses in Horses. [Text] Journal of Fungi. – 2025. – № 11 – P. 297. DOI: 10.3390/jof11040297
Sharma M., Sharma M. Influence of environmental factors on the growth and sporulation of geophilic keratinophiles from soil samples of Public Park. [Text] Asian Journal of Experimental Sciences. – 2009. – № 23(1) – P. 307–312.
Gnat S., Łagowski D., Nowakiewicz A., Dyląg M. A global view on fungal infections in humans and animals: Infections caused by dimorphic fungi and dermatophytoses. [Text] Journal of Applied Microbiology. – 2021.
Кухар Е.В., Курманов Б.А., Киян В.С., Егорчева Е.В., Муранец А.П., Шарипова А.М., Панченко Н.А., Никулина А.И. Изменение традиционного спектра возбудителей трихофитии крупного рогатого скота в Казахстане. [Text] Роль ветеринарной науки и практики в эффективном развитии животноводства: мат. межд. науч.-практ. конф. – Алматы, 2012. –
P. 333–340.
National Research Council (US) Institute for Laboratory Animal Research. The Development of Science-based Guidelines for Laboratory Animal Care: Proceedings of the November 2003 International Workshop. [Text] Washington (DC): National Academies Press (US). – 2004. – International Guiding Principles for Biomedical Research Involving Animals (1985). Available from: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK25438/
Елинов Н.П., Васильева Н.В., Разнатовский К.И. Дерматомикозы или поверхностные микозы кожи и её придатков – волос и ногтей. [Text] Лабораторная диагностика. Проблемы медицинской микологии. – 2018. – № 10(1) – P. 33.
Саттон Д., Фоторгилл А., Ринальди М. Определитель патогенных и условно-патогенных грибов. [Text] – Москва: Издательство Мир, 2001. – 382 с.
Ciesielska A., Kawa A., Kanarek K., et al. Metabolomic analysis of Trichophyton rubrum and Microsporum canis during keratin degradation. [Text] Sci. Rep. – 2021. – № 11 – P. 3959. DOI: https://doi.org/10.1038/s41598-021-83632-z
Kidd S., Catriona H., Helen A., David E. Descriptions of Medical Fungi. [Text] – Australia: National Mycology Reference Centre, 2016. – 3rd ed. – P. 54–62.
Wang R., Yu A., Qiu T., Guo Y., Gao H., Sun X., Gao M., Wang X. Aerosolization behavior of fungi and its potential health effects during the composting of animal manure. [Text] Int. J. Environ. Res. Public Health. – 2022. – № 5644 – P. 1–16.
Bart-Delabesse E., Latgé J.P. Ecology and genetic diversity of Aspergillus fumigatus. [Text] In: The Mycota, XII Human Fungal Pathogens. – Springer-Verlag, Berlin, Germany, 2004. – P. 25–36.
Hatmaker E.A., Rangel-Grimaldo M., Raja H.A., Pourhadi H., Knowles S.L., Fuller K., Rokas A. Genomic and phenotypic trait variation of the opportunistic human pathogen Aspergillus flavus and its close relatives. [Text] Microbiol. Spectrum. – 2022. – № 10 – e03069-22.
Roohi B., Nemati S., Alipour A., Faeli L., Mayahi S., Haghani I., Shalchizadeh M., Darini A., Al-Hatmi A.M.S., Abastabar M., Shokohi T. Otomycosis: The foremost aetiological agent causing otitis externa and the antifungal susceptibility pattern in North-Western Iran. [Text] Mycoses. – 2023. – № 66 – P. 87–97.
Han Y.F., Shen X., Liang J.D., Liang Z.Q. Taxonomic advance and characteristics of the genus Chrysosporium. [Text] J. Mt. Agric. Biol. – 2017. – № 36 – P. 1–5.
Cabañes F.J., Sutton D.A., Guarro J. Chrysosporium-related fungi and reptiles: A fatal attraction. [Text] PLoS Pathog. – 2014. – № 10 – e1004367.
Bensch K., Braun U., Groenewald J.Z., Crous P.W. The genus Cladosporium. [Text] Stud. Mycol. – 2012. – № 72 – P. 1–401.
Jangid R., Begum T. Isolation and Identification of Keratinophilic Fungi from Soil Samples of Different Animal Habitat of Ajmer District, India. [Text] Int. J. Pure Appl. Biosci. – 2018. – № 6(2) – P. 646–652. DOI: 10.18782/2320-7051.6344
Ali-Shtayeh M.S., Arda H.M., Hassouna M., Shaheen S.F. Keratinophilic fungi on the hair of goats from the West Bank of Jordan. [Text] Mycopathologia. – 1988. – № 104(2) – P. 103–108. DOI: 10.1007/BF00436935
Abdel-Gawad K.M. Mycological and some physiological studies of keratinophilic and other moulds associated with sheep wool. [Text] Microbiol. Res. – 1997. – № 152(2) – P. 181–188. DOI: 10.1016/S0944-5013(97)80011-0
Bagy M.M., Abdel-Mallek A.Y. Saprophytic and keratinolytic fungi associated with animals hair from Riyadh, Saudi Arabia. [Text] Zentralbl. Mikrobiol. – 1991. – № 146(4) – P. 305–310.
Dworecka-Kaszak B., Biegańska M.J., Dąbrowska I. Occurrence of various pathogenic and opportunistic fungi in skin diseases of domestic animals: a retrospective study. [Text] BMC Vet. Res. – 2020. – № 16 – P. 248. DOI: https://doi.org/10.1186/s12917-020-02460-x
Gurung S.K., Adhikari M., Kim S.W., et al. Discovery of two Chrysosporium species with keratinolytic activity from field soil in Korea. [Text] Mycobiology. – 2018. – № 46(3) – P. 260–268. DOI: https://doi.org/10.1080/12298093.2018.1514732
Kačinová J., Tančinová D., Labuda R. Keratinophilic fungi in soils stressed by occurrence of animals. [Text] J. Microbiol. Biotechnol. Food Sci. – 2013. – № 2 (special issue 2) – P. 1436–1446.
Muhammad A.Y., Amonov M., Baig A.A., Alvi F.J. Gut Microbiome: An Intersection between Human Genome, Diet, and Epigenetics. [Text] Adv. Gut & Microbiome Res. – 2024. –
№ 6707728 – P. 1–17. DOI: https://doi.org/10.1155/2024/6707728
