ИФТ ЖИЫНТЫҒЫНЫҢ ҚҰРЫЛЫСЫНДА БИОТИН-СТРЕПТАВИДИН ЖҮЙЕСІН ҚОЛДАНУ ЖӘНЕ ОНЫҢ ҚОЙДЫҢ КАТАРАЛЬДЫ ҚЫЗБАСЫ ВИРУСЫНА АНТИДЕНЕЛЕРДІ АНЫҚТАУДАҒЫ СЕЗІМТАЛДЫҚҚА ӘСЕРІ
DOI:
https://doi.org/10.52578/2305-9397-2025-4-2-166-174Ключевые слова:
ИФТ, биотин-стрептавидин, сезімталдық, қой катаральды қызбасы, серомониторинг, диагностикаАннотация
Мақалада төрт түрлі ИФТ-жиынтығының (IDEXX, IDVET, BioStone және қойдың катаральды қызба вирусына антиденелерді анықтауға арналған, биотин-стрептавидин жүйесі негізінде құрастырылған BTV-OBP тәжірибелік отандық жинағы) сезімталдығын салыстырмалы талдау нәтижелері баяндалады. Зерттеудің мақсаты – әр жинақтың анықтау шегін бағалап, серомониторинг пен эпизоотиялық қадағалауда қолданылу жарамдылығын тексеру. Тесттер сериялық сұйылту әдісімен орындалды: оң бақылау сарысуы 1:2-ден 1:256-ға дейінгі титрлерге дейін сұйылтылып, әр нүктеде оптикалық сигналдың сақталуы бағаланды. Антиденелерді анықтау шегі қолданылған сынақ жүйесіне қарай едәуір өзгеретіні анықталды: тәжірибелік биотин-стрептавидин ИФТ- жиынтығы және IDEXX коммерциялық жиынтығы 1:64 сұйылтуына дейін оң нәтижелерді тұрақты сақтап қалды, ал IDVET және BioStone жинақтарында төмен титрлерде сигнал әлсіреп, кесімді шектен төмен түсті. Бұл айырмашылық биотин-стрептавидин көпсайманының жоғары аффинділігі мен иммуно-кешендердің қатты фазада берік фиксациялануы арқылы әлсіз сигналдарды күшейтуімен түсіндіріледі. Қорытындылай келе, биотин-стрептавидин жүйесін сынақ дизайнына енгізу аналитикалық сезімталдықты арттырып, арнайы антиденелердің төмен деңгейлерін сенімді анықтауға мүмкіндік береді. Бұл жануарлар ауруларын ерте кезеңде айқындау, серомониторингтің дәлдігін жоғарылату және профилактикалық шараларды уақтылы жоспарлау үшін практикалық тұрғыдан маңызды. Сонымен қатар, әдістемелік валидацияның (қайталанғыштық, тұрақтылық, өзгергіштік) толық циклі тиімділікті одан әрі растауға бағытталуы тиіс.
Библиографические ссылки
Mertens P.P.C., Maan S., Samuel A., Attoui H. Bluetongue virus, family Reoviridae: genus Orbivirus // Fauquet C.M. et al. Virus Taxonomy. VIIIth Report of the ICTV. – London: Elsevier Academic Press, 2005. – P. 191-197.
MacLachlan N.J., Mayo C.E. Bluetongue: pathogenesis and epidemiology of an emerging orbiviral disease of livestock // Vet. Pathol. – 2013. – Vol. 50, №. 4. – P. 885-897.
OIE. Bluetongue (Infection with bluetongue virus) // OIE Terrestrial Manual. – Paris: OIE, 2021. – P. 1-24. URL: https://www.woah.org (дата обращения: 26.08.2025).
Hofmann M.A., et al. VP7-based serological assays for bluetongue virus diagnosis // Vet. Microbiol. – 2008. – Vol. 133, №. 1-2. – P. 119-129.
Chand K., Biswas S.K., Mondal B. Development and evaluation of a recombinant VP7-based competitive ELISA for serodiagnosis of bluetongue virus in India // Biologicals. – 2017. – Vol. 45, №. 1. – P. 54-59.
De Clercq K., Vandenbussche F., Vanbinst T., et al. Evaluation of different serological techniques for bluetongue virus antibody detection // Vet. Microbiol. – 2008. – Vol. 129, №. 1-2. – P. 166-177.
Afshar A., Thomas F.C., Wright P.F. Comparison of indirect ELISA and virus neutralization test for the detection of bluetongue antibodies in cattle and sheep // J. Hyg. (Lond.). – 1987. – Vol. 99, №. 3. – P. 691-699.
Reddington J.J., Gorman B.M. Evaluation of indirect ELISA for detecting bluetongue virus antibodies in sheep // Vet. Microbiol. – 1990. – Vol. 24, №. 1. – P. 1-12.
Lunt R.A., White J.R., Blacksell S.D. Evaluation of an indirect ELISA for bluetongue virus antibody detection in cattle and comparison with competitive ELISA // J. Vet. Diagn. Invest. – 1998. – Vol. 10, №. 1. – P. 12-18.
Parsonson I.M., Della-Porta A.J. The pathogenesis of bluetongue virus infection of sheep // Aust. Vet. J. – 1988. – Vol. 65, №. 2. – P. 58-63.
Batten C.A., Maan S., Shaw A.E., et al. A European field evaluation of a competitive ELISA for bluetongue virus antibody detection // Vet. Microbiol. – 2008. – Vol. 129, №. 1-2. – P. 124-133.
Savini G., MacLachlan N.J., Sanchez-Vizcaino J.M., Zientara S. Vaccines against bluetongue in Europe // Comp. Immunol. Microbiol. Infect. Dis. – 2008. – Vol. 31, №. 2–3. – P. 101-120.
Crowther J.R. The ELISA Guidebook. 2nd ed. – Totowa, NJ: Humana Press, 2009. – 566 p.
Wilchek M., Bayer E.A. The avidin–biotin complex in bioanalytical applications // Anal. Biochem. – 1988. – Vol. 171, №. 1. – P. 1-32.
Green N.M. Avidin and streptavidin // Methods Enzymol. – 1990. – Vol. 184. – P. 51–67.
Lakshmipriya T., Seo E., Ahn Y.H. Enhancement of ELISA sensitivity using biotin–streptavidin system: applications and perspectives // Sens. Actuators B Chem. – 2016. – Vol. 237. – P. 1108-1117.
Luong J.H.T., Male K.B., Glennon J.D. Biotin–streptavidin interaction: chemistry, biology, applications, and biosafety // ACS Omega. – 2019. – Vol. 4, №. 21. – P. 21420-21430.
Kamel M., et al. Modified streptavidin–biotin based lateral flow test strip for improved sensitivity // Sci. Rep. – 2024. – Vol. 14. – Article 11134.
Qin P., et al. Biotin–streptavidin amplified ELISA for detection of rabies virus antibodies // J. Virol. Methods. – 2012. – Vol. 185, №. 1. – P. 132-136.
Zhao Y., et al. Streptavidin–biotin enhanced ELISA for detection of avian influenza virus H5N1 antibodies // Vet. Immunol. Immunopathol. – 2011. – Vol. 142, №. 1-2. – P. 23-28.
Mohapatra J.K., et al. Biotin–streptavidin amplified ELISA for foot-and-mouth disease serodiagnosis // J. Virol. Methods. – 2014. – Vol. 208. – P. 19-25.
