СОСУДИСТАЯ АРИХИТЕКТОНИКА МАТКИ КОРОВ: ВОЗРАСТНЫЕ ИЗМЕНЕНИЯ И АССИМЕТРИЯ
DOI:
https://doi.org/10.52578/2305-9397-2025-4-2-217-228Ключевые слова:
матка коров, морфометрические показатели, сосудистая асимметрия, эндометрий, репродуктивная функцияАннотация
В работе представлено комплексное морфологическое и морфометрическое исследование сосудистой архитектоники матки коров с акцентом на возрастные изменения и праволевую асимметрию. Объектом исследования были рога и тело матки коров голштинской породы (n=19, 24–108 мес), разделённых на шесть групп по числу отёлов (от первотёлок до ≥8). Материал отбирали из средней трети стенки рогов и тела; срезы окрашивали гематоксилином и эозином и по Гимзе. Морфометрию (внешний/внутренний диаметр сосудов, толщина средней оболочки и адвентиции, плотность элементов микроциркуляторного русла) выполняли с применением световой микроскопии и цифровой морфометрии (LAS EZ, ImageJ).
Установлена выраженная возрастная динамика: до 3–4 отёлов наблюдалась физиологическая гипертрофия сосудистой стенки и увеличение калибра сосудов, отражающие пиковую функциональную нагрузку репродуктивного периода. Начиная с 6–7 отёлов фиксировались инволютивные изменения в стенках микрососудов: уменьшение внешнего и внутреннего диаметра артерий, истончение мышечной оболочки и адвентиции, предполагающее снижение эластичности. Выявлена правосторонняя сосудистая доминанта: в правом роге показатели диаметра и толщины стенки были выше, чем в левом, что согласуется с более частой гестационной нагрузкой правого рога. Тело матки характеризовалось относительной устойчивостью параметров во всех возрастных группах. В микроциркуляторном русле эндометрия отмечены плотные петлеобразные капиллярные сети, в миометрии — более редкая сеть с артериовенозными анастомозами; с возрастом происходило умеренное расширение венул, уменьшение числа функционирующих капилляров и признаки склерозирования.
Полученные данные уточняют закономерности формирования и перестройки сосудистого русла матки коров, демонстрируя сочетание возрастной инволюции и региональной асимметрии; результаты могут быть использованы для профилактики репродуктивных нарушений и оптимизации технологий воспроизводства в молочном животноводстве.
Библиографические ссылки
Moor R. M., Rowson L. E. A. Local uterine mechanisms affecting luteal function in the sheep // Journal of Reproduction and Fertility. – 1966. – Vol. 11, No. 2. – P. 307–310.
Hadek R., Getty R. Cyclic changes in the uterine epithelium and glands of the pig // American Journal of Veterinary Research. – 1963. – Vol. 24. – P. 597–605.
Betteridge K. J., Eaglesome M. D., Randall G. C. B., Mitchell D. Embryo transfer and related research in cattle // Biology of Reproduction. – 1978. – Vol. 19, No. 1. – P. 57–68.
Bazer F. W., Johnson G. A., Spencer T. E. Novel aspects of the physiology of pregnancy in domestic animals // Animals. – 2025. – Vol. 15, No. 18. – Art. 2672.
Denis M., Rahmy E., Houël A., et al. Ageing-driven molecular and functional changes in the bovine endometrium // PLOS ONE. – 2025. – Vol. 20. – e0332176.
Matsuno Y., Han Y., Ciechanowicz K., et al. Biological aging and uterine fibrosis in cattle // Cells. – 2025. – Vol. 14, No. 13. – 955.
StatSoft, Inc. STATISTICA (data analysis software system), version 10. – Tulsa, OK (USA) : StatSoft Inc., 2011.
Snedecor G. W., Cochran W. G. Statistical Methods. – 6th ed. – Ames : Iowa State University Press, 1961. – 593 p.
Mathew D. J., Newsom E., Ashworth C. J., Bazer F. W., Spencer T. E. Ruminant conceptus– maternal interactions: interferon-τ and beyond // Frontiers in Veterinary Science. – 2022. – Vol. 9. – 860321.
Madureira G., et al. Endometrial responsiveness to interferon-τ and its implications for fertility in dairy cows // Journal of Dairy Science. – 2024.
Fontes P. L. P., Gifford C. A., Bromfield J. J., Lemley C. O. Applied use of Doppler ultrasonography in bovine reproduction // Frontiers in Animal Science. – 2022. – Vol. 3. – 912854.
Sharawy H. A., Zaghloul A., Abdalla A. A., et al. Vaginal and uterine blood flow changes during Ovsynch and impact on pregnancy rates in Holsteins // BMC Veterinary Research. – 2022. – Vol. 18. – 348.
Henao-Gonzalez M., Camargo L., Garcia-Lopez D. A., et al. Ultrasonographic screening of dairy cows with normal postpartum uterine involution // Veterinary Medicine International. – 2023. – 2023:2597332.
Dai T., Wang Y., Wen Y., et al. Pattern of postpartum uterine involution in Chinese Holsteins and effect of parity // Animals. – 2023. – Vol. 13, No. 23. – 3693.
De Silva M., et al. Early pregnancy diagnosis in cows using corpus luteum blood flow and ISG mRNAs // BMC Veterinary Research. – 2024. – Vol. 20. – 4438.
Nanas I., et al. Ultrasonographic findings of the corpus luteum and placentomes; blood flow metrics during gestation in cows // Reproduction in Domestic Animals. – 2021. – Vol. 56, No. 6. –
P. 886–897.
Siqueira L. G. B., et al. Vascular and morphological features of the bovine corpus luteum // Journal of Dairy Science. – 2019. – Vol. 102, No. 11. – P. 10338–10358.
Redifer C. A., Sivinski S. E., MacPherson J. A., et al. Late-gestation nutrient restriction: effects on uterine artery blood flow and fetal growth in beef cows // Journal of Animal Science. – 2024. – Vol.
– skae145.
Gimeno I., et al. The recipient metabolome explains the asymmetric ovarian function in cattle // Scientific Reports. – 2024. – Vol. 14. – 11677.
Wyse J., Latif S., Gurusinghe S., et al. Phytoestrogens: impacts on reproductive physiology and other effects upon grazing livestock // Animals. – 2022. – Vol. 12, No. 19. – 2709.
Wyse J., McCormick J., Weston L. A., et al. Effects of mixed pasture legume phytoestrogens on superovulation and embryo yield in beef cows // Animals. – 2024. – Vol. 14, No. 7. – 1125.
Fasulkov I. R., Yotov S. A., Vasilev N. G., Karadaev M. S. Doppler ultrasound measurements of bovine uterine artery blood flow: review // Veterinary Medicine and Science. – 2021. – Vol. 7, No. 6. – P. 2162–2173.
Lin Y., et al. Postpartum uterine involution and embryonic development in dairy cows // Frontiers in Veterinary Science. – 2021. – Vol. 7. – 604729.
Тегза А. А., Хасанова М. А., Яблочкова Г. С., Себенов Н. Т. К вопросу о методике биопсии эндометрия у коров // 3i: Интеллект, Идея, Инновации. – 2023. – № 4. – С. 46–53.
Хасанова М. А., Тегза А. А., Абилова З. Б., Мендыбаева А. Б. Морфофункциональная характеристика эндометрия матки коров при катаральном эндометрите // 3i: Интеллект, Идея, Инновации. – 2024. – № 1. – С. 55–60.
Узынтлеуова А. Д., Жаксылыкова А. С., Жумагулова Ж. К. Патогистологическая картина эндометрия коров при скрытом эндометрите // Вестник Западно-Казахстанского аграрно- технического университета. – 2024. – Т. 13, № 1. – С. 202–210.
Токаев З., и др. Материалы по патологическим процессам матки коров // Вестник Западно- Казахстанского аграрно-технического университета им. Жангир хана. – 2024. – Т. 13, № 1. – С. 202– 210.
Гани А. А., Баймуканов Д. А., и др. Эффективность сравнительных схем лечения хронического эндометрита у коров // Ветеринария и кормление. – 2024. – № 2. – С. 58–63.
Ракецкий В., Тегза А. А., и др. Эффективность применения системы AlphaVision в воспроизводстве коров // 3i: Интеллект, Идея, Инновации. – 2025. – № 3. – С. 23–30.
Noakes D. E., Parkinson T. J., England G. C. W. Arthur’s Veterinary Reproduction and Obstetrics. – 10th ed. – London : Elsevier, 2019. – 848 p.
Suvarna K. S., Layton C., Bancroft J. D. Bancroft’s Theory and Practice of Histological Techniques. – 8th ed. – London : Elsevier, 2019. – 672 p.
Field A. Discovering Statistics Using IBM SPSS Statistics. – 5th ed. – London : SAGE, 2018. – 1104 p.
